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Conservazione campioni fecali: tempistiche di vitalità per metodo di preservazione

L'integrità del campione fecale è altamente sensibile a tempo e temperatura. Raccolta, trasporto e conservazione corretti sono critici per risultati accurati in microbiologia, parassitologia e test molecolari.

Tempi massimi di conservazione per condizione di stoccaggio

CondizioneTemperaturaFinestra vitalitàTest adattiTest non adatti
Temperatura ambiente20–25°C≤ 2 ore (ideale < 1 h)Limitati: tossina C. difficile (alcuni kit), antigene rapidoColtura, O&P, PCR, grassi fecali, elastasi, calprotectina
Refrigerato2–8°C24–72 ore (ottimale ≤ 24h)Coltura (batterica), O&P, tossina/PCR C. diff, sangue occulto, leucociti fecali, calprotectina, elastasiAlcuni virus, organismi fastidiosi (vitalità Campylobacter cala)
Congelato≤ -20°C (preferibile -70/-80°C)Mesi/anniPCR/molecolare, antigene virale, microbioma, metaboloma, calprotectina (stabile)Coltura (organismi muoiono), O&P (morfologia distrutta), sangue occulto (emoglobina degrada)
Conservanti (Cary-Blair, ParaPak, SAF, Formalina 10%, PVA)Temp. ambiente (per kit)Giorni/settimane (specifico kit)O&P (Cary-Blair, SAF, PVA), Coltura (Cary-Blair), PCR (maggior parte)Formalina: no coltura, no antigene; PVA: no coltura

Requisiti test-specifici

  • Coltura batterica (Salmonella, Shigella, Campylobacter, E. coli O157, Yersinia): mezzo trasporto Cary-Blair; processare ≤ 48h refrigerato. Campylobacter: ≤ 24h, microaerofilo.
  • Ova e Parassiti (O&P): SAF (acetato sodio-acido acetico-formalina) o PVA (alcol polivinilico) – preserva morfologia settimane. Non conservato: ≤ 1 h per trofozoiti.
  • C. difficile: Non conservato refrigerato ≤ 24h (tossina EIA); PCR stabile congelato settimane.
  • PCR virale (Norovirus, Rotavirus, Adenovirus): Congelato -70°C preferito; refrigerato ≤ 72h.
  • Grassi fecali (quantitativo 72h): Refrigerato per tutto il periodo raccolta; nessun conservante.
  • Calprotectina / Elastasi: Refrigerato ≤ 72h; congelato stabile mesi.
  • Microbioma / Metagenomica: Congelato -80°C immediato (OMNIgene•GUT, alternative RNAlater a temp. ambiente).

Best practice raccolta

  1. Usare contenitore pulito, asciutto, a bocca larga (nessuna contaminazione urinaria).
  2. Riempire 1/3–1/2 per feci solide; liquido – contenitore pieno.
  3. Etichettare: ID paziente, data/ora, test richiesti.
  4. Trasportare in laboratorio ASAP; se ritardo, refrigerare (non congelare se non istruito).
  5. Per O&P: consegnare 3 campioni in giorni alterni (aumenta sensibilità 90%+).

Errori comuni che invalidano i risultati

  • Contaminazione urinaria (diluisce, altera pH, inibisce coltura).
  • Ritardo eccessivo a temp. ambiente → sovracrescita coliformi, morte patogeni.
  • Congelamento campione non conservato per coltura/O&P.
  • Conservante sbagliato per test richiesto.
  • Volume insufficiente.

Regola d'oro: Fresco è meglio. Processare entro 2 ore o usare mezzo di trasporto appropriato. Comunicare con il laboratorio per requisiti specifici.

Riferimento: ASM/CLSI M40-A2, CDC DPDx, CAP Microbiology Checklist. SOP specifiche del laboratorio prevalgono su linee guida generali.